NEURÓPTEROS IBÉRICOS
Clasificación
NEURÓPTEROS DE LA PENÍNSULA IBÉRICA Y BALEARESFuente: http://www.fauna-iberica.mncn.csic.es/ Autor de esta revisión/Author of this review: Luisa M. Diaz Aranda Nº de géneros/N. of genera: 55 ; Nº de especies/N. of species: 169 |
Palpares libelluloides // Autor: Ferran Turmo Gort |
Ord. Neuroptera Linnaeus, 1758 Fam. Myrmeleonidae Latreille,1803Subfam. Palparinae (Banks,1911)Gen. Palpares Rambur,1842Palpares libelluloides (linnaeus,1764)Palpares hispanicus Hagen1860Subfam. Myrmeleoninae Latreille,1803Gen. Acanthaclisis Rambur,1842Acanthaclisis occitanica (Villers,1789)Acanthaclisis baetica Rambur,1842Gen. Myrmecaelurus Costa, 1855Subgen. Myrmecaelurus Costa,1855Myrmecaelurus (Myrmecaelurus) trigrammus (Pallas,1781)Gen. Solter Navás,1912Solter liber Navás,1912Gen. Myrmeleon Linnaeus,1767Subgen. Myrmeleon Linnaeus,1767Myrmeleon (Myrmeleon) formicarius Linnaeus,1767Myrmeleon (Myrmeleon) gerlindae Hölzel,1974Subgen. Morter Navás,1915Myrmeleon (Morter) hyalinus Olivier,1811Myrmeleon (Morter) inconspicuus Rambur,1842Gen. Euroleon Esben-Petersen,1918Euroleon nostras (Fourcroy,1785)Gen. Macronemurus Costa 1855Macronemurus appendiculatus (Latreille,1807)Gen. Neuroleon Navás,1909Neuroleon nemausiensis (Borkhausen,1791)Neuroleon egenus (Navás,1903)Neuroleon distichus (Navás,1903)Neuroleon arenarius (Navás,1904)Neuroleon ocreatus (Navás,1904)Gen. Distoleon Banks,1910Distoleon tetragrammicus (Fabricius,1798)Distoleon annulatus (Klug,1843)Gen. Nemoleon Navás,1909Nemoleon notatus (Rambur,1842)Gen. Creoleon Tyllard,1918Creoleon lugdunensis (Villers,1789)Creoleon aegyptiacus (Rambur,1842)Gen. Megistopus Rambur,1842Megistopus flavicornis (Rossi,1790)Gen. Gymnocnemia Schneider,1845Gymnocnemia variegata (Schneider,1845)Fam. Ascalaphidae Rambur,1842Subfam. Ascalaphinae Rambur,1842Gen. Bubopsis Mclachlan,1898Bubopsis agrioides (Rambur,1842)Gen. Deleproctophilla Lefebvre,1842Deleproctophylla dusmeti Navás,1914Gen. Puer Lefebvre,1842Puer maculatus (Olivier,1789)Gen. Libelloides Tjeder,1972Libelloides longicornis (Linnaeus,1764)Libelloides coccajus (Denis et Schiffermüller,1775)Libelloides ictericus (Charpentier,1825)Libelloides baeticus (Rambur,1842)Libelloides hispanicus (Rambur,1842)Libelloides cunii (Seyls-Longchamps,1880)Fam. Nemopteridae Burmeister,1839Subfam. Crocinae Navás,1910Gen. Josandreva Navás,1906Josandreva sazi Navás,1906Gen. Pterocroce Withycombe,1923Pterocroce capillaris (Klug,1836)Subfam. Nemopterinae Burmeister,1839Gen. Nemoptera Latreille,1802Nemoptera bipennis (Illiger,1812)Gen. Lertha Navás, 1910Lertha sofiae Monserrat,1988Fam. Osmylidae Leach,1815Subfam. Osmylinae Leach,1815Gen. Osmylus Latreille,1802Osmylus fulvicephalus (Scopoli,1763)Fam. Sisyridae Handlirsch,1908Gen. Sisyra Burmeister,1839Sisyra fuscata (Fabricius,1793)Sisyra dalii McLachlan,1866Sisyra iridipennis Costa,1884Fam. Berothidae Handlirsch,1908Subfam. Berothinae Handlirsch,1908Gen. Berotha Walker,1860Berotha glaserella Aspöck et Aspöck et Hölzel, 1979Fam. Mantispidae Leach,1815Subfam. Mantispinae Leach,1815Gen. Mantispa Illiger,1798Mantispa styriaca (Poda,1761)Gen. Perlamantispa Handchin,1960Perlamantispa perla (Pallas,1772)Perlamantispa icterica (Pictet,1865)Fam. Dilaridae Newman,1853Gen. Dilar Rambur,1842Dilar nevadensis Rambur,1842Dilar meridionalis Hagen,1866Dilar saldubensis Navás in Laguna,1902Dilar dissimilis Navás,1903Dilar pumilus Navás,1903Dilar juniperi Monserrat,1988Fam. Hemerobiidae Latreille,1803Gen. Drepanepteryx Leach,1815Drepanepteryx phalaenoides (Linnaeus,1758)Gen. Megalomus Rambur,1842Megalomus hirtus (Linnaeus,1761)Megalomus tortricoides Rambur,1842Megalomus tineoides Rambur,1842Megalomus pyraloides Rambur,1842Gen. Wesmaelius Krüger,1922Subgen. Wesmaelius Krüger,1922Wesmaelius (Wesmaelius) coccinus (Stephens,1836)Wesmaelius (Wesmaelius) quadrifasciatus (Reuter,1894)Subgen. Kimminsia Killington,1937Wesmaelius (Kimminsia) nervosus (Fabricius,1793)Wesmaelius (Kimminsia) subnebulosus (Stephens,1836)Wesmaelius (Kimminsia) navasi (Andreu,1911)Wesmaelius (Kimminsia) ravus (Withycombe,1923)Wesmaelius (Kimminsia) malladai (Navás,1925)Wesmaelius (Kimminsia) fassnidgei (Killington,1933)Wesmaelius (Kimminsia) helveticus (Aspöck et Aspöck,1964)Wesmaelius (Kimminsia) reisseri Aspöck et Aspöck,1982Gen. Hemerobius Linnaeus,1758Subgen. Hemerobius Linnaeus,1758Hemerobius (Hemerobius) humulinus Linnaeus,1758Hemerobius (Hemerobius) nitidulus Fabricius,1777Hemerobius (Hemerobius) micans Olivier,1792Hemerobius (Hemerobius) lutescens Fabricius,1793Hemerobius (Hemerobius) perelegans Stephens,1836Hemerobius (Hemerobius) stigma Stephens,1836Hemerobius (Hemerobius) pini Stephens,1836Hemerobius (Hemerobius) simulans Walker,1853Hemerobius (Hemerobius) gilvus Stein,1863Hemerobius (Hemerobius) contumax Tjeder,1932Hemerobius (Hemerobius) handschini Tjeder,1957Gen. Micromus Rambur,1842Subgen. Micromus Rambur,1842Micromus (Micromus) variegatus (Fabricius,1793)Subgen. Nesomicromus Perkins,1899Micromus (Nesomicromus) paganus (Linnaeus,1767)Micromus (Nesomicromus) angulatus (Stephens,1836)Micromus (Nesomicromus) lanosus (Zeleny,1962)Gen. Psectra Hagen,1866Psectra diptera (Burmeister,1839)Gen. Sympherobius Banks,1904Subgen. Sympherobius Banks,1904Sympherobius (Sympherobius) elegans (Stephens,1836)Sympherobius (Sympherobius) pygmaeus (Rambur,1842)Sympherobius (Sympherobius) fallax Navás,1908Sympherobius (Sympherobius) gratiosus Navás,1908Subgen. Niremberge Navás,1909Sympherobius (Niremberge) fuscescens (Wallengren,1863)Sympherobius (Niremberge) pellucidus (Walker,1853)Sympherobius (Niremberge) riudori Navás,1915Sympherobius (Niremberge) klapaleki Zeleny,1963Fam. Chrysopidae Schneider,1851Subfam. Nothochrysinae Navás,1910Gen. Nothochrysa McLachlan,1868Nothochrysa capitata (Fabricius,1793)Nothochrysa fulviceps (Stephens,1836)Gen. Hypochrysa Hagen,1866Hypochrysa elegans (Burmeister,1839)Subfam. Chrysopinae Schneider,1851Trib. Belonopterygini Navás,1913Gen. Italochrysa Principi,1946Italochrysa italica (Rossi,1790)Italochrysa stigmatica (Rambur,1842)Trib. Chrysopini Schneider,1851Gen. Nineta Navás,1912Nineta flava (Scopoli,1763)Nineta pallida (Schneider,1851)Nineta guadarramensis (Pictet,1865)Gen. Chrysopidia Navás,1910Chrysopidia ciliata (Wesmael,1841)Gen. Chrysopa Leach,1815Chrysopa perla (Linnaeus,1758)Chrysopa pallens (Rambur,1838)Chrysopa phyllochroma Wesmael,1841Chrysopa viridana Schneider,1845Chrysopa nigricostata Brauer,1850Chrysopa formosa Brauer,1850Chrysopa nierembergi Navás,1908Chrysopa regalis Navás,1915Gen. Mallada Navás,1925Mallada prasinus (Burmeister,1839)Mallafa genei (Rambur,1842)Mallada venosus (Rambur,1842)Mallada clathratus (Schneider,1845)Mallada flavifrons (Brauer,1850)Mallada granadensis (Pictet,1865)Mallada picteti (McLachlan,1880)Mallada inornatus (Navás,1901)Mallada subcubitalis (Navás,1901)Mallada ibericus (Navás,1903)Mallada alarconi (Navás,1915)Mallada ventralis (Curtis,1834)Gen. Peyerimhoffina Lacroix,1920Peyerimhoffina gracilis (Schneider,1851)Gen. Chrysoperla Steinmann,1964Chrysoperla carnea (Stephens,1836)Chrysoperla mutata (McLachlan,1898)Chrysoperla mediterranea (Hölzel,1972)Chrysoperla ankylopteryformis Monserrat et Díaz-Aranda,1989Gen. Rexa Navás,1919Rexa lordina Navás,1919Gen. Cunctochrysa Hölzel,1970Cunctochrysa albolineata (Killington,1935)Cunctochrysa baetica (Hölzel,1972)Gen. Suarius Navás,1914Suarius walsinghami Navás,1914Suarius tigridis (Morton,1921)Suarius iberiensis Hölzel,1974Gen. Brinckochrysa Tjeder,1966Brinckochrysa nachoi Monserrat,1977Fam. Coniopterygidae Burmeister,1839Subfam. Aleuropteryginae Enderlein,1905Gen. Aleuropteryx Löw,1885Aleuropteryx loewii Klapalek,1894Aleuropteryx maculata Meinander,1963Aleuropteryx minuta Meinander,1965Aleuropteryx juniperi Ohm,1968Aleuropteryx iberica Monserrat,1977Aleuropteryx remane Rausch et Aspöck et Ohm,1978Gen. Helicoconis Enderlein,1905Subgen. Helicoconis Meinander,1972Helicoconis (Helicoconis) hirtinervis Tjeder,1960Subgen. Ohmopteryx Meinander,1972Helicoconis (Ohmopteryx) pseudolutea Ohm,1965Subgen. Fontenellea Meinander,1972Helicoconis(Fontenellea) panticosa Ohm,1965Helicoconis (Fontenellea) hispanica Ohm,1965Helicoconis (Fontenellea) iberica Ohm,1965Subfam. Coniopteryginae Burmeister,1839Gen. Coniopteryx Curtis,1834Subgen. Coniopteryx Curtis,1834Coniopteryx (Coniopteryx) tineiformis Curtis,1834Coniopteryx (Coniopteryx) borealis Tjeder,1930Coniopteryx (Coniopteryx) parthenia (Navás et Marcet,1910)Coniopteryx (Coniopteryx) ezequi Monserrat,1984Subgen. Holoconiopteryx Meinander,1972Coniopteryx (Holoconiopteryx) haematica Mclachlan,1868Coniopteryx (Holoconiopteryx) drammonti Rousset,1964Subgen. Metaconiopteryx Kis et Nagler et Mandru, 1970Coniopteryx (Metaconiopteryx) esbempeterseni Tjeder,1930Coniopteryx (Metaconiopteryx) Tjederi Kimmins,1934Coniopteryx (Metaconiopteryx) lentiae Aspöck et Aspöck,1964Coniopteryx (Metaconiopteryx) arcuata Kis,1965Subgen. Xeroconiopteryx Meinander,1972Coniopteryx (Xeroconiopteryx) atlasensis Meinander,1963Coniopteryx (Xeroconiopteryx) loipetsederi Aspöck,1963Coniopteryx (Xeroconiopteryx) atlantica Ohm,1963Coniopteryx (Xeroconiopteryx) perisi Monserrat,1967Coniopteryx (Xeroconiopteryx) kerzhneri Meinander,1971Coniopteryx (Xeroconiopteryx) ketiae Monserrat,1985Gen. Parasemidalis Enderlein,1905Parasemidalis fuscipennis (Reuter,1894)Parasemidalis triton Meinander,1976Gen. Hemisemidalis Meinander,1972Hemisemidalis pallida (Withycombe,1924)Gen. Semidalis Enderlein,1905Semidalis aleyrodiformis (Stephens,1836)Semidalis vicina (Hagen,1861)Semidalis pluriramosa (Karny,1924)Semidalis pseudouncinata Meinader,1963Gen. Nimboa Navás,1915Nimboa espanoli Ohm,1973Nimboa adelae Monserrat,1985Gen. Conwentzia Enderlein,1905Conwentzia psociformis (Curtis,1834)Conwentzia pineticola Enderlein,1905 |
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“Reconocimiento y manejo de Neuroptera”
“Diploma de E.P.U. en Control de Plagas de Insectos”. Módulo II. Insectos depredadores. cap. 3
Autora: Celeste Pérez Bañón
INTRODUCCIÓN
Los neurópteros son un pequeño y primitivo orden de insectos holometábolos en el que se incluyen las conocidas crisopas y hormigas león. Este orden englobaba antiguamente tres subórdenes, Megaloptera, Raphidioptera y Planipennia. Actualmente, los dos primeros se tratan como órdenes independientes, mientras que Planipennia se considera sinónimo de Neuroptera.
Se trata de un grupo muy diversificado, con cerca de 6.000 especies agrupadas en 6 superfamilias que a su vez comprenden 17 familias. En la península Ibérica están representadas 11 familias incluidas en las siguientes superfamilias ...
Publicaciones
Once especies de chrisópidos han sido recogidas en trampas Mc Phail durante 1982. Sobre un total de 3.747 individuos, se indican en la Tabla 11 las especies identificadas, por orden de importancia numérica. Las especies más importantes son sin duda Chrysoperla carnea y Anisochrysa flavifrons, alcanzando ellas dos el 85 % de los insectos recolectados. Así mismo, en otros paises como Grecia (CANAR1D9,7 8) y Francia (ALROUECHyD Ic ol., 1980), estas dos especies ocupan lugares destacados entre los chrisópidos capturados en el olivar. Otros Neurópteros recogidos también en trampas Mc Phail son Wesmaelius (Kiminsia) subnebulosus (Hemerobiidae) durante marzo, abril y mayo y Raphidia sp. (Raphidiidae) en junio. Hay que señalar que en la zona de estudio se encuentra además Chrysopa septempunctata Wesmael, la cual ha sido observada durante 1981 y 1982 en los meses de septiembre y octubre, sobre trampas tipo delta (amearillas y blancas) y verticales amearillas, dispuestas para ensayos de Prays oleae y Dacus oleae.
Autor:M. Campos
RESUMEN
Los estudios realizados durante los últimos 4 años (1982-85) en un olivar del Sur de España demuestran que el parasitismo no desempeña un papel de primer orden como factor limitante de las poblaciones de Chrysoperla carnea. Los porcentajes de parasitismo más elevados se observan sobre larvas y capullos (27.7 %) y se deben a Isodrolizus puncticeps y Helorus sp. Se ha registrado también el parásito secundario Pachyneuron concolor. La acción de Telenomus acrobates, único parásito de huevos observado, alcanza el 6.6 % de los mismos, siendo más baja aún la acción de Chrysopophthorus chrysopimagilzis ya que solo afecta al 3.3 Oh de los adultos de Ch. carnea, de los cuales el 86.4 O4 son hembras. Otros Chrisópidos adultos parasitizados por ésta especie son Anisochrysa flavifrons, A. prasina y A. picteti.
Autor: ALBERTO URBANEJA, ANTONIO MUÑOZ, ANTONIO GARRIDO Y JOSEP-ANTÓN JACAS
RESUMEN
Para conocer la incidencia del depredador generalista Chrysoperla carnea (Stephens) (Neuroptera: Chrysopidae) sobre las poblaciones del minador de las hojas de los cítricos, Phyllocnistis citrella Stainton (Lepidoptera.: Gracillariidae) se muestrearon dos huertos de cítricos de la Comunidad Valenciana, durante toda una campaña. La depredación encontrada sobre el minador no pudo relacionarse con las poblaciones de ensopas presentes en el cultivo. Sin embargo, se observó una relación entre la presencia de C. carnea, y las poblaciones de pulgones. La depredación sobre P. citrella, aumentó a partir de junio, independientemente del nivel poblacional de C. carnea, y se alcanzó un valor máximo de 38% a finales del verano. En este trabajo se presentan, datos sobre la biología de C. carnea en condiciones de laboratorio alimentada exclusivamente con minador. C. carnea completó el ciclo biológico en 42 días, depredando una media de 75 larvas L3 de minador. Sin embargo, la mortalidad natural en este ensayo fue alta, especialmente en el estado de pupa (90%).
Autor: P. MEDINA, F. BUDIA, H. VOGT, P. DEL ESTAL, E. VIÑUELA
RESUMEN
Larvas de Chrysoperla carnea (Stephens) fueron alimentadas con huevos de Sitotroga cerealella (Olivier) tratados de forma residual en Torre de Potter con Azadiractina y Tebufenocida o con pulverizador manual con Spinosad en un rango de concentraciones de 10 a 10.000 mg i.a./l. En una segunda serie de experimentos las larvas del depredador se alimentaron de pulgones que, a su vez, se habían desarrollado en habas tratadas con Azadiractina y Spinosad a las dosis máximas de campo recomendadas en España y Alemania, respectivamente. La alimentación de larvas con huevos de S. cerealella tratados con Azadiractina y Tebufenocida no afectó significativamente ni el desarrollo ni la reproducción de C. carnea, aunque se detectó una importante reducción en el porcentaje de emergencia de adultos cuando los huevos fueron tratados con 10.000 mg i.a./l de Azadiractina. Spinosad, a la dosis más alta, impidió la emergencia de adultos. Las larvas alimentadas con pulgones criados en plantas tratadas con Azadiractina y Spinosad se desarrollaron con normalidad y no se observaron efectos en la fecundidad. Se comparan los resultados obtenidos mediante este tipo de contaminación con otros métodos de exposición a los insecticidas, explicando las causas de la selectividad de los mismos con este tipo de tratamiento.
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Efectos secundarios de la azadiractina, vía contacto residual, en larvas jóvenes del depredador Chrysoperla carnea Stephens (Neuroptera, Chrysopidae).
Autor: H. Vogt, M. González, A. Adán, G. Smagghe y E. Viñuela
RESUMEN
La aplicación vía contacto residual en laboratorio de dos formulaciones de azadiractina a la dosis máxima recomendada en campo: 0,3% de NeemAzal- T/S y 0,15% de Align, produjo diversos efectos negativos en las larvas L, del depredador Chrysoperla carnea (Stephens). El efecto fue más acusado en el caso de la formulación aceitosa NeemAzal-T/S, pero ambos compuestos provocaron la muerte de prácticamente todos los insectos a lo largo de su desarrollo larvario, un retraso en éste, un menor peso de las larvas, descoordinación de sus movimientos y menor movilidad, así como diversas malformaciones al mudar: mandíbulas distorsionadas, melanización anormal, expulsión del intestino, y restos de la exuvia adheridos al final del cuerpo. Bajo el microscopio electrónico se observaron alteraciones en cutícula y músculos de los insectos tratados: inclusión de cuerpos densos a los electrones, desorientación de las microfibrillas, destrucción de mitocondrias y fibras musculares más ralas.
Bibliografía
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